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烟台电镜技术服务免费咨询 迈斯普生物科技

发布时间:2023-05-12 07:39:00        作者:迈斯普







武汉迈斯普生物科技有限公司是一家***从事生物医学技术服务、技术咨询及产品开发的生物技术服务企业。公司坐落于武汉光谷,由3位归国博士创办。公司长期致力于建立并完善多项基础生物技术服务平台。现凭借自身技术特色,依托光谷生物城技术产业优势,面向***提供的生物技术服务。

透射电子显微镜(Transmission electron microscope,缩写TEM),简称透射电镜 [1]  ,是把经加速和聚集的电子束投射到非常薄的样品上,电子与样品中的原子碰撞而改变方向,从而产生立体角散射。6、不要在关控制台电源的同时,立刻放气到样品室和电子***,以免引起电子***探测器上残余高压放电,损坏灯丝及闪烁体。散射角的大小与样品的密度、厚度相关,因此可以形成明暗不同的影像,影像将在放大、聚焦后在成像器件(如荧光屏、胶片、以及感光耦合组件)上显示出来。


透射电镜取材的基本要求

一、动物组织取材流程及要求 取材流程:动物或断头急性处死,快速解剖出所需的或

组织,生理盐水简单冲洗血液及组织液,置于液滴中,用 锋利的刀片按要求将组织切成 1mm3左右小块,固定于 2.5% 固定液中。 取材要求: 1、位置:肝、肺、脾等无需定位组织取 1mm3组织,3-5 块;细胞自噬(autophagyorautophagocytosis):又称为Ⅱ型细胞,是细胞在自噬相关基因(autophagyrelatedgene,Atg)的调控下利用溶酶体降解自身受损的细胞器和大分子物质的过程。需要 定位组织如骨骼肌、、肠、血管、胰岛等组织取材大小为 0.5mm × 1mm×3mm 左右的长条状,且保证观察结构在组织块中。 2、操作:试剂、容器、器械提前 4℃预冷;组织离体后,1min 内 浸入固定液。取材时,可提前准备一个载玻片(硬卡纸),






一、细胞取材流程及要求 取材流程:细胞直接刮下(不可胰酶消化,会造成细胞损伤),细胞悬

液离心,弃上清,PBS 洗 2 次(敏感的细胞直接固定,不洗,否则会造成

细胞器损伤),低速(1000-3000rpm)离心成团,加入组织及细胞电镜 2.5%固定 液 4℃过夜后快递。悬浮细胞、菌液可直接视为 细胞悬浮液操作。固体培养基培养的菌可直接将菌落挑到 PBS 中,后续 操作一致。

取材要求: 1、细胞数量充足(6cm 或 10cm 皿长满),离心后在 ep 管中绿豆大小; 2、缓冲液、固定液等 PH 值 7.3-7.4,4℃提前预冷; 3、贴壁细胞连着培养基用细胞刮斜着朝一个方向快速铲下,不要反复来回刮;一般经15~20min后,真空度即可达到10^-4~10^-5Torr,持高真空指示灯亮后,透射电镜即可开始使用。 4、细胞悬液转入离心管,1000-3000rpm

离心成团,弃上清,加 PBS,将细胞转入 1.5ml 尖 头 ep 管,再次离心后弃上清。再加

PBS 重复上述步骤,后加

2.5%固定,4℃保存。 操作轻柔,尽量保证细胞不散开。(转速及时间请结合细胞情况,尽量低转速、短时间,以 细胞离心成团为准!(PBS 清洗时间过长,易造成细胞损伤);




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